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实验动物外包价格性价比出众,英瀚斯

实验动物的给法 (一)注射给药法 1. 皮射 注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤,右手持将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下,大鼠在背部或侧下腹部;豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位;兔在背部或耳根部注射;蛙可在脊背部淋巴囊注射;狗多在大腿外侧注射,拔针时,轻按片刻,防药液逸出。 2. 皮内注射 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或
实验动物外包价格







实验动物的给法




(一)注射给药法

1. 皮射 注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤,右手持将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下,大鼠在背部或侧下腹部;豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位;兔在背部或耳根部注射;蛙可在脊背部淋巴囊注射;狗多在大腿外侧注射,拔针时,轻按片刻,防药液逸出。

2. 皮内注射 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。 如将一定量的性同位素溶液、颜料或致炎物质、等注入皮内,观察其消失速度和局部血液循环变化,作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是:将动物注射部位的毛剪去,消毒后,用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内,然后使针头向上挑起并再稍刺入,即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉注射 当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的时,常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位,多选臀部。

注射时针头要垂直刺入肌肉,如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时,选大腿外侧肌肉进行注射。

4. 腹腔注射 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒,然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下,沿皮下向前推进约0.5厘米,再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔,此时有落空感,回抽无肠液、尿液后,缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。

5. 静脉注射 是将药液直接注射于静脉管内,使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快,作用时间较短。

小鼠、大鼠的静脉注射:常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根, 左右两侧和背侧各1根,两侧尾静脉比较容易固定,故常被采用。操作时,先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75%酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角质软化,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉充盈,注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。







方法SD大鼠30只,采用随机数字表法随机分成5组每组6只:正常对照组(Control组),生理盐水组(NS组),尼古J3 mg. kg-1.d-1组(NT3组),尼古丁9mg-kg-1.d-1组(NT9组)和尼古丁18 mg." kg-1. d1组(NT18组),.分别不zhu射,皮下zhu射生理盐水,尼古丁1 mg/kg,3 mg/kg和6

mg/kg,3次/d,连续7d.末次注射后60 min皮xia注射美加明1 mg/kg.观察大鼠注射尼古J期间和戒断后体重变化,存活情况和古丁戒断评分另外选取Control组NS组和NT9组各6只大鼠测定右下肢足底MWT和TWL.结果与NT3组比较,注射尼古丁后第7天.NT9组和NT18组大鼠体重增加缓慢[(3.8+1.3),(2.0+0.3)g vs (7.2+1.0)g](P <0.05),戒断后di1天和第2天大鼠体重增加迅速(P <0.01).NT9组和NT18组大鼠美加明激发后出现更多的戒断症状(P<0.01,.NT18组大鼠si亡率为17%.与Control组比较.NT9组大鼠在尼古J戒断后MWT与TWL明显降低(P <0.01).结论间断皮xia注射尼古J9 mg-kg-1.d-17 d可以成功制作改良尼古J依赖戒断大鼠模型,尼古J戒断后大鼠疼痛敏感性加高.








丙泊酚干预对大鼠视神经损伤的影响

 方法: SD大鼠67只,随机取20只为正常组,不予任何处理。余行视神经钳夹法造模,造模成功42只纳入实验。随机分为:模型对照组和丙泊酚组,各21只/组。造模后4 d,以TUNEL法检测大鼠视网mo和视神经细胞凋亡,造模后7 d,RT-PCR、Western-blot检测视wang膜和视神经节细胞组织Caspase-3、BCL-2基因和蛋白表达。造模后14 d,行闪光视觉诱发电位检测,处死大鼠取眼球,观察各组大鼠视wang膜和视神经的病理形态,行视wang膜神经节细胞计数。







记忆再现缺失动物模型怎么制备/

  1.建模材料动物:老鼠1,药1物:酒精,设备:DS-2老鼠声光单向穿梭箱。

  2.建立模型的方法是训练以避开黑暗。训练后,在重新测试前30分钟给予小鼠40%酒精0.1 ml/10 g,然后重新测试并在30分钟后测试记忆力。也可以使用皮下1注射,并且在训练前5分钟和训练后24小时向小鼠注射10 ml/kg的40%酒精。

  避免使用深色方法:在实验过程中,将鼠标脸放回明亮房间的孔中,然后同时启动计时器。动物离开洞穴,进入黑暗的房间,受到电1击,计时自动停止。弹出鼠标,记录下进入暗室所需的时间,然后将其置于暗室中,然后经历电1击。这是潜伏期。 24小时后重复测试,并记录进入暗室的动物数量,潜伏期和5分钟内的电1击次数(错误的次数)。如果您没有在5分钟内进入暗室,则潜伏期为300秒。

  3.建模原理酒精具有抑制情绪的作用,这可能会影响记忆力。

  4.建模后的更改。激动时,我在服药后20分钟内出现,此后变得安静,但步态却摇摆不定。暗保护方法表明正常对照组的测试错误数为(0.96±0.58)s,测试错误的潜伏期为(221.2±29.8)s。模型组中的测试错误数为(3.74±0.69),测试错误的潜伏期为(48.7±19.3)s。平台跳跃和水迷宫实验均显示出明显的记忆障碍。








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