大鼠心ji梗死模型
造模方法
10%水合氯醛(300mg/kg)腹腔注射麻zui大鼠;大鼠胸部剃毛备皮,取仰卧位,气管插管,小动物呼吸机辅助呼吸;腹腔注射a托品40μg/kg防止术中心动过缓和呼吸道分泌物增多,连接心电监护;无菌操作从左侧第4或5肋间进胸,结扎左心耳下前降支冠状动脉,关胸缝皮,青mei素腹腔注射抗感ran,呼吸恢复后拔除气管插管,单笼饲养,注意保温。
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10%水合氯醛(300mg/kg)腹腔注射麻zui大鼠;大鼠胸部剃毛备皮,取仰卧位,气管插管,小动物呼吸机辅助呼吸;腹腔注射a托品40μg/kg防止术中心动过缓和呼吸道分泌物增多,连接心电监护;无菌操作从左侧第4或5肋间进胸,结扎左心耳下前降支冠状动脉,关胸缝皮,青mei素腹腔注射抗感ran,呼吸恢复后拔除气管插管,单笼饲养,注意保温。
手术造模图片
病理结果
动物模型的分类
按产生原因分类
诱发性或实验性动物模型( Experimental Animal Models )
实验性动物模型是指研究者通过使用物理的、化学的和生物的致病因素作用于动物,造成动物组织、或全身一定的损害,出现某些类似人类疾病时的功能、代谢或毒使动物患相应的,又如用化学致癌剂、线、致癌病毒诱发动物的等。诱发性疾病动物模型具有能在短时间内出大量疾病模型,并能严格控制各种条件使出的疾病模型适合研究目的需要等特点,因而为近代医学研究所常用,特别是筛选研究工作所。但诱发模型和自然产生的疾病模型在某些方面毕竟存在一定差异。因此在设计诱发性动物模型要尽量克服其不足,发挥其特点。
实验动物大、小鼠的采血方法
1、动物实验中剪尾采血:需血量少时可用此方法。将动物固定,显露尾部,将尾尘剪去约5mm,从尾根部向尾端部,血即从断端流出。若用二棉球涂擦尾部或事先将鼠尾浸在45℃水中数分钟,使尾部血管充盈,可采到较多的血,但注意二可致溶血。也可用锋利刀片割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出,采血后,消毒,止血。如将动物取血量可更多些。小鼠每次采血约0.1ml,大鼠约0.4 ml。为了多次反复取血应尽量从鼠尾末端开始。
2、动物实验中摘眼球采血:此法常用于鼠类大量采血。用左手固定动物,压迫眼球,尽量使眼球突出,右手用无钩弯镊子或弯止血钳迅速摘除眼球,立即将鼠倒置,头朝下,眼眶内很快流出血液。一般只适用于一次采血。大部动物采血后可以存活,可采另一侧眼球取血。
大鼠后眼框静脉丛取血方法
4、动物实验中颈静脉或颈动脉采血:将鼠,剪去一侧颈部外侧被毛,作颈静脉或颈动脉分离手术,用即可抽出所需血量。也可插入导管,反复采血。
5、断头采血:操作者左手拇指和食指握住鼠颈部,头朝下,用利剪在头颈间1/2处迅速剪动物头部,提起动物,血液即可流入准备好的容器中。
6、心脏采血:将动物,使其仰位固定,剪去胸前区毛,消毒皮肤,在左侧第3—4肋间选择心博强处穿刺,血液借心脏跳动的力量进入。亦可在动物后,切开动物胸腔,直视心脏内抽血或剪破心脏,直接用、吸管等吸血。
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