控制氧传递速率。氧传递速率主要考虑KLa的影响因素。从一定意义上讲，KLa愈大，好氧生物反应器的传质性能愈好。
控 制KLa的途径可分为操作变量、反应液的理化性质和反应器的结构3个部分。发酵罐的分类:按照发酵罐的设备,分为机械搅拌通风的和非机械搅拌通风发酵罐按照微生物的生长代谢需要,分为好气型发酵罐和厌气型发酵灌。操作变量包括温度、压力、通风量和转速(搅拌功率)等；发酵液
闪蒸罐生产厂家
控制氧传递速率。氧传递速率主要考虑KLa的影响因素。从一定意义上讲，KLa愈大，好氧生物反应器的传质性能愈好。
控 制KLa的途径可分为操作变量、反应液的理化性质和反应器的结构3个部分。发酵罐的分类:按照发酵罐的设备,分为机械搅拌通风的和非机械搅拌通风发酵罐按照微生物的生长代谢需要,分为好气型发酵罐和厌气型发酵灌。操作变量包括温度、压力、通风量和转速(搅拌功率)等；发酵液的理化性质包括发 酵液的黏度、表面张力、氧的溶解度、发酵液的组成成分、发酵液的流动状态、发酵类型等；反应器的结构指反应器的类型、反应器各部分尺寸的比例、空气分布器 的形式等。当然有些因素是相互关联的。
值得注意的是，在培养过程中并不是维持DO越高越好。即使是专性好气菌，过高的DO对生长可能不利。过量的氧形成新生O，超氧化物O2-和过氧化物基O22-，破坏许多细胞组分，进而破坏微生物生长。
结束语
发 酵液中的氧含量对菌体生长和产物形成都有着重要的影响，溶氧量的控制主要从氧的溶解和传递两个方面考虑。传热系数高，管内冷却水流速高，传热系数为1200~4100kj/(m2。随着计算机和自动化技术的发展，发酵工业中从DO 的测量到分析控制都正逐步走向自动及控制一体化模式，研究利用DO作为补料的在线控制信号[9]将大大提高了发酵调控的准确性和自动化性能。
然而，在DO测量方面目前使用较多的三种方法导管法，质谱电极法及电化学检测法因均使用膜，在检测精度和作为调控信号响应时间方面还有待进一步提高。
发酵罐液体制作的误区
发酵罐液体制作需要发酵罐本身质量过硬，又需要操作者具有扎实的食用菌基本功，更重要的是不能陷入发酵罐液体制作的几个误区。
误区一：接种量越大越好
很多人认为发酵罐的接种量越大越好，可是尝试过加大接种量却没有得到想要的效果，难道加大接种量让液体长得更快的想法不对吗？
关于发酵罐接种量应该这样说，在能保证纯度，和多次接种安全的情况下，可以加大接种量，即使如此，接种量也不是越大越好，根据菇行天下多年的经验，发酵罐的接种量不宜超过5%。
为什么呢？首先我们看大多数人加大接种量的手段，就是原来接种一个摇瓶，改为接种多个摇瓶，我们接种一个摇瓶，在不考虑摇瓶本身纯度的前提下，接种环节导致发酵罐染菌的几率为10%，那么，接种3个摇瓶的染菌几率就是30%，是原来一瓶的3倍。典型如乙醇发酵，对溶DO的控制分两个阶段，初始提供高DO值进行菌体扩大培养，后期严格控制DO进行厌氧发酵。如果考虑摇瓶本身的纯度，染菌几率就是原来的6倍。
很多人会采取合拼摇瓶的方法，就是将多个摇瓶在无菌条件下合拼在一个大三角瓶里，也叫做拼瓶，拼瓶是危险的，千万不要尝试！即使是在超净工作台里拼瓶，也很危险，更不要说在接种箱里了。在微生物发酵过程中,溶解氧浓度与其它过程参数的关系极为复杂,受到生物反应器中多种物理、化学和微生物因素的影响和制约。因为：多个摇瓶的合拼就是多次接种的过程，一旦环境不合格或者操作不当，或者其中一个摇瓶带有杂菌，那么后果显而易见。
因此，不要试图通过加大接种量的方法解决发酵罐染菌的问题，你要做的是保证一瓶摇瓶的活性和纯度，还有一次发酵罐接种环节的绝1对安全，那么你就成功了50%。
误区二：通气量越大越好
很多人为了让发酵罐的菌球更小、更均匀，而提高了发酵罐的进气量，目的是通过提高进气压力，增强发酵罐内部的搅拌效果，已达到使菌球变小的目的。这样不仅不能让菌球变小，反而会增加染菌的几率。
发酵罐的结构特性
1.可在线CIP清洗、SIP灭菌(121°C/0.1MPa)。
2.按照卫生级要求设计，结构设计极具人性化，操作方便。传动平稳，噪音低。
3.适宜的径高比设计，按需定制搅拌装置，节能，搅拌、发酵效果好。
4.内罐体表面镜面抛光处理(粗糙度Ra≤0.4µm)；各进出管口、视镜、人孔等工艺开孔与内罐体焊接处均采用拉伸翻边工艺圆弧过渡，光滑易清洗无死角，保证生产过程的可靠性、稳定性，符合“cGMP”等规范要求。
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