基于基因工程技术制备小分子特异性antibody
通过大量的实验发现，小分子的偶联物并不是不能产生特异性针对小分子的抗1体，而是效价过低，不满足制备多克1隆抗1体和单克1隆抗1体的需要，但是基因工程手段为制备该类型小分子特异性antibody提供了新的思路。该技术的核心在于制备antibody的基因文库，通过噬菌体展示技术、核糖体展示技术等获取antibody的目的基
预染色蛋白质marker
基于基因工程技术制备小分子特异性antibody
通过大量的实验发现，小分子的偶联物并不是不能产生特异性针对小分子的抗1体，而是效价过低，不满足制备多克1隆抗1体和单克1隆抗1体的需要，但是基因工程手段为制备该类型小分子特异性antibody提供了新的思路。该技术的核心在于制备antibody的基因文库，通过噬菌体展示技术、核糖体展示技术等获取antibody的目的基因，再利用蛋白表达系统制备重组antibody或者改造antibody，以获取针对小分子的特异性antibody。目前随着antibody基因测序信息的公布和完善，为人工设计antibody提供了基础，这也会以后小分子特异性antibody的制备提供了新的途径。
PCR产物的回收（胶回收试剂盒）
1.胶回收的目的（1）去除非特异性扩增的产物（2）去除多余的底物（3）去除多余的Taq酶（4）得到目的片段
2.胶回收的过程（1）切胶：紫外下切胶，称重。之后用枪头将胶块捣碎。切胶的刀片建议选用一次性刀片，实验台等也尽可能用乙醇擦拭干净。可通过空EP管与装胶EP管质量的差值计算胶的质量。注意切胶时尽可能避免切到条带外的凝胶，且避免紫外时间过长。别忘记胶条有厚度，前后多余的部分也尽量切除。
（2）溶胶：每1 mg胶加入1 μL膜结合液（MB），按比例1:1加入MB，55℃水浴溶解。每1~2 min震荡混匀，待溶解后至少在水浴中保持1~2 min，保证胶块完全溶解。在电泳过程中，DNA会与大分子的多糖紧密结合，凝胶的种类和质量不同，DNA与之结合力也不同，只有凝胶充分溶解DNA才能充分释放。否则，凝胶将与DNA一起沉淀下来，洗脱后将影响回收结果的纯度。（3）结合：将溶胶转移至纯化柱内，12000 rpm离心1 min，倒掉收集管中的废液，将纯化柱重新插回收集管中。胶块完全溶解后建议将胶液温度降至室温再上柱，因为纯化柱在温度较高时结合DNA的能力较弱。
适用于ＰＣＲ研究的提取法：
1 田间剪取植株新鲜叶片5-10ｍｇ(约2ｃｍ长)左右,新鲜叶片放于1 5ｍｌ离心管中,存于冰盒中,根据样品号贴上相应的标签。
2 用剪刀将叶片组织剪细(约0 5ｃｍ长)放在点穴式研板中。
3 加入400μｌＤＮＡ提取缓冲液,用玻棒将叶组织研细,直到液体变成深绿色即可。
4 再加400μｌＤＮＡ提取缓冲液,混合均匀,转入一新的1 5ｍｌ离心管(贴上相应的编号)。
5 加400μｌ氯1仿,混合均匀后,2400×ｇ离心30ｓ,将上清液转入一支新的1 5ｍｌ离心管(贴上相应的编号)。
6 加800μｌ无水乙醇,混匀,2400×ｇ离心3ｍｉｎ。弃上清。
7 70%乙醇冲洗,风干。
8 用50μｌＴＥ缓冲液溶解,存于-20℃。
9 取1μｌ用于ＰＣＲ分析。
为什么用无水乙醇沉淀DNA
用无水乙醇沉淀DNA，这是实验中较常用的沉淀DNA的方法。乙醇的优点是可以任意比和水相混溶， 乙醇与核酸不会起任何化学反应，对DNA很安全，因此是理想的沉淀剂。
DNA溶液是DNA以水合状态稳定存在，当加入乙醇时，乙醇会夺去DNA周围的水分子，使DNA失水而易于聚合。一般实验中，是加2倍体积的无水乙醇与DNA相混合，其乙醇的zui终含量占67%左右。 因而也可改用95%乙醇来替代无水乙醇(因为无水乙醇的价格远远比95%乙醇昂贵)。
但是加95%的乙醇使总体积增大，而DNA在溶液中有一定程度的溶解，因而DNA损失也增大， 尤其用多次乙醇沉淀时，就会影响收得率。折中的做法是初次沉淀DNA时可用95%乙醇代替无水乙酵， 后面的沉淀步骤要使用无水乙醇。也可以用0.6倍体积的异丙1醇选择性沉淀DNA。一般在室温下放置15-30分钟即可。
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