动物实验检测的取材要求介绍：
实验小鼠取材要求
采血后，立即将血液放入1.5mL离心管(不需加抗凝剂或防腐剂)。让血液在室温下静置30-60分钟。在相对离心力（relativecentrifugalforce，RCF）14000g下离心血样10-15分钟，用移液管吸取分离，并转移到干净的离心管中。可将样本在14000g下再离心2-3分钟，以分离任何剩余的红
动物全自动生化检测
动物实验检测的取材要求介绍：
实验小鼠取材要求
采血后，立即将血液放入1.5mL离心管(不需加抗凝剂或防腐剂)。让血液在室温下静置30-60分钟。在相对离心力（relativecentrifugalforce，RCF）14000g下离心血样10-15分钟，用移液管吸取分离，并转移到干净的离心管中。可将样本在14000g下再离心2-3分钟，以分离任何剩余的红细胞。将分离好的转移到干净的离心管中。
实验小鼠血浆取材要求
血液必须在采血时或采血后立即与剂充分混合。采血时与抗凝剂混合方法：用于血液收集的无菌1mL可以将1mL剂从小瓶吸入，然后将全部剂重新注回小瓶，即在采血前用剂“灌注”采血的。采血后与抗凝剂混合方法：向1.5mL离心管中加入不超过150μL的抗凝剂。在相对离心力14000g下离心血样10-15分。用移液管吸取分离的血浆，并转移到干净的离心管中。可将血浆样本在14000g下再离心2-3分钟，以分离任何剩余的红细胞。将分离好的血浆转移到干净的离心管中。
神经元原代培养是将胚胎哺乳动物神经系统的部分组织，如大脑皮层、海马、脊髓等脑组织直接取出，再接种培养的方法。目前国内、外有关神经元培养的方法较多，但在原代培养中神经元的纯度和产量方面还存在一些急待解决的问题。由于神经元是一种高度分化的细胞，相对于其它细胞而言，神经元在体外更难以存活和生长。因此，体外培养神经元要求的培养方法和营养条件均较为特殊。
神经细胞的体外培养技术是研究神经源性疾病的发病机制、进程的一个重要工具，能很好的、直观的反映离体神经元的发育状况和生理活性，如何建立一个稳定成熟的神经细胞培养体系是神经系统疾病体外实验研究顺利进行的基础。随着基础医学及临床医学研究的逐渐深入，神经细胞的体外培养技术在脑损伤、神经疾病、衰老相关神经疾病方面得到广泛重视和普及应用。
原位杂交过程
杂交前可进行预杂交，以防止较高的背景染色。预杂交条件与杂交条件相同，只是预杂交液中不含探针和硫酸葡聚糖。
靶DNA的变性（对mRNA的原位杂交无需此步）
样品DNA的变性在DNA-DNA杂交检测中是必须的步骤，但同时可能会造成样品形态学的部分破坏，此步是实验中需要优化的一个步骤。常用的变性方法为碱变性和热变性，实验时可以摸索变性时间、变性温度等参数以获得佳条件。
如使用热变性方法，可在杂交时将探针的变性和样品DNA变性同步进行：将样品和探针溶液加盖盖玻片，置于烘箱80℃变性，染色体DNA样品处理2min，后冷却至37℃进行杂交。组织样品DNA的变性时间可增加至80℃10min。
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