试纸条的检测步骤
如果检测样品超过 3 个，可用单道移液器加样，多道移液器混匀样品;
如果检测样品数量超过 8 个，请按照 8 个一组，分批检测。
1. 从冰箱中取出试剂盒、样品，使其恢复到室温;
2. 调节恒温金属浴温度至 40℃，并稳定在 40℃;
3. 打开试剂桶，取出所需要数量的白色微孔，并立即密封好试剂桶;
4. 将白色微孔放置于
安普未来核酸检测试纸条代理商
试纸条的检测步骤
如果检测样品超过 3 个，可用单道移液器加样，多道移液器混匀样品;
如果检测样品数量超过 8 个，请按照 8 个一组，分批检测。
1. 从冰箱中取出试剂盒、样品，使其恢复到室温;
2. 调节恒温金属浴温度至 40℃，并稳定在 40℃;
3. 打开试剂桶，取出所需要数量的白色微孔，并立即密封好试剂桶;
4. 将白色微孔放置于 40℃恒温金属浴中;
5. 将奶样混合均匀，吸取 200μl 于白色微孔中，吹吸 7～10 次，混合均匀，尽量避免吸头内残留液体;
6. 于 40℃温育 9min;
7. 取出相应数量红色微孔和试纸条，置于恒温金属浴中，并盖好试剂桶，在试纸条吸水纸处做好标记;
8. 反应结束后，将白色微孔中的 200vl 样品转移至红色微孔中，吹吸 8～10 次左右
9. 于 40℃温育 2min;
10. 当温育结束，将试纸条样品垫端插入微孔中;
11. 于 40℃温育 5min;
12. 温育结束，取出试纸条，刮去试纸条下端的样品垫，2 分钟内进行结果判读(参照“结果判读”);
13. 检测完毕，将余下的试剂放回 2～8℃保存。
试纸条原理
本产品采用层析式双抗原体夹心法检测核酸扩增产F物。与传统的琼脂糖凝胶电泳检测相比,核酸检测试纸条操作简单,判读迅速,不含有毒物质,无需任何仪器设备。
用户仅需在引物设计时将-条引 物标记为生物素(Biotin) ,另-条|物标记为异硫酸荧光素(FITC)或6羧基荧光素(6-FAM) ,并确保双链扩增产物一端生物素(Biotin)修饰, -端6-FAM或者FITC修饰,本产品适用于PCR扩增或RPA等温扩增后的产品进行检测。
试纸条检测结果怎么看？
新冠试纸检测结果的判断分为三种情况，一是阳性结果，二是阴性结果，三是检测无效。 对于阴性结果，为C区检测一条横线，在M区和G区没有横线这种情况，考虑抗原体为阴性。 阳性结果分为三种情况，为IgM阳性、IgG阳性或IgM和IgG同时阳性，这三种情况在C区检测均有一条横线。如果是IgM和IgG抗原体均为阳性，在C区、M区、G区为三条横线。如果是IgM抗原体阳性，在C区和M区两条横线。如果是IgG抗原体阳性，在C区和G区两条横线。 如果患者在C区没有横线，为无效检测。
试纸条的抗原检测
1.根据试剂说明书，将采集样本后的鼻拭子立即置于采样管中，拭子头应在保存液中旋转混匀至少30秒，同时用手隔着采样管外壁挤压拭子头至少5次，确保样本充分洗脱于采样管中。
2.用手隔着采样管外壁将拭子头液体挤干后，将拭子弃去。采样管盖盖后，将液体垂直滴入检测卡样本孔中。
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