模式动物服务
公司自建有260平米动物中心，包括大鼠房、小鼠房、兔子房、裸鼠房，可承接包括大鼠、小鼠、兔子，裸鼠房，动物组均来自于动物医学相关，有丰富的动物造模经验。动物中心常规手术仪器、设备，并与南京各大高校、医院动物实验中心长期合作，可开展动物放疗、mic-CT、MRI、成像等特色动物实验。瑞士洛桑联邦理工学院的SilvestroMicera博士补充说：英国“废除
医学动物实验外包
模式动物服务
公司自建有260平米动物中心，包括大鼠房、小鼠房、兔子房、裸鼠房，可承接包括大鼠、小鼠、兔子，裸鼠房，动物组均来自于动物医学相关，有丰富的动物造模经验。动物中心常规手术仪器、设备，并与南京各大高校、医院动物实验中心长期合作，可开展动物放疗、mic-CT、MRI、成像等特色动物实验。瑞士洛桑联邦理工学院的SilvestroMicera博士补充说：英国“废除解剖学”的JarrodBailey博士对此研究表示谴责。
承接过的部分动物模型
动物合作平台部分设备展示
实验动物的抓取和固定
在进行实验时，为了不损伤动物的健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，首先要限制动物的活动，使动物处于安静状态，工作人员必须掌握合理的抓取固定方法。抓取动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解。操作时要小心仔细、大胆敏捷、熟练准确、不能粗暴，不能恐吓动物，同时，要爱惜动物，使动物少受痛苦。01),气道坏死糜lan、小气道阻塞发生率级气道平滑肌增sheng等指标显著高于6周组(P<。
实验动物的分组
(一)分组的原则：进行动物实验时，经常需要将选择好的实验动物按研究的需要分成若干组。动物分组应按随机分配的原则，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去，以避免各组之间的差别,影响实验结果，特别是进行准确的统计检验,必须在随机分组的基础上进行。实验方法Step1：用高脂肪高糖的膳食饲喂小鼠，诱导出胰岛素，持续约4-6周。
每组动物数量应按实验周期长短、实验类型及统计学要求而定。如果是慢性实验或需要定期处死动物进行检验的实验，就要求选较多的动物，以补足动物自然和认为处死所丧失的数量，确保实验结束时有合乎统计学要求的动物数量存在。
(二)建立对照组：分组时应建立对照组。1.自身对照组：是指实验数据而言。实验动物本身在实验处理前、后两个阶段的各项相关数据就分别是对照组和实验组的实验结果，此法可排除生物间的个体差异。2.平行对照组：有正对照组和负对照组两种。给实验组动物某种处理，而给正对照组用同样方法进行处理，但并不采用实验所要求的或手段，负对照组则不给任何处理。3.具体分组时，应避免人为因素, 随机把所有的动物进行编号，然后令其双数为Ａ组(实验组),单数为B组(对照组)即可或反之。如果要分若干个组时，应该用随机数字表示进行完全随机分组。动物模型设计的注意事项注意模型要尽可能再现所要求的人类疾病模型时必须强调从研究目的出发，熟悉诱发条件、宿主特征、疾病表现和发病机理，即充分了解所需动物模型的全部信息，分析是否能得到预期的结果。
实验动物的采集方法
1. 大鼠、小鼠的采集：用颈椎脱臼法处死动物,剥离出胸骨或股骨，用吸取少量的Hank平衡盐溶液，冲洗出胸骨或股骨中全部液。如果是取少量的作检查，可将胸骨或股骨剪断，将其断面的挤在有稀释液的玻片上，混匀后涂片凉干即可染色检查。
2. 大动物的采集：狗等大动物的采集可采取穿刺方法。 先将动物、固定、局部除毛、消毒皮肤，然后估计好皮肤到的距离，把穿刺针的长度固定好。操作人员用左手把穿刺点周围的皮肤绷紧，右手将穿刺针在穿刺点垂直刺入，穿入固定后，轻轻左右旋转将穿刺针钻入，当穿刺针进入腔时常有落空感。狗的采集，一般采用髂骨穿刺。狗的胰总管开口于十二指肠降部，在紧靠肠壁处切开胰管，结扎固定并与导管相连，即可见无色的胰液流入导管。
狗等大动物常用的穿刺点：胸骨：穿刺部位是胸骨体与胸骨柄连接处。肋骨：穿刺部位是第5～7肋骨各点的中点。胫骨：穿刺部位是股骨内侧、靠下端的凹面处。如果穿刺采用的是肋骨，穿刺结束后要用胶布封贴穿刺孔，防止发生。
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