大鼠心ji梗死模型
造模方法
10％水合氯醛(300mg/kg)腹腔注射麻zui大鼠；大鼠胸部剃毛备皮，取仰卧位，气管插管，小动物呼吸机辅助呼吸；腹腔注射a托品40μg/kg防止术中心动过缓和呼吸道分泌物增多，连接心电监护；无菌操作从左侧第4或5肋间进胸，结扎左心耳下前降支冠状动脉，关胸缝皮，青mei素腹腔注射抗感ran，呼吸恢复后拔除气管插管，单笼饲养，注意保温。
神经系统模型价格
大鼠心ji梗死模型
造模方法
10％水合氯醛(300mg/kg)腹腔注射麻zui大鼠；大鼠胸部剃毛备皮，取仰卧位，气管插管，小动物呼吸机辅助呼吸；腹腔注射a托品40μg/kg防止术中心动过缓和呼吸道分泌物增多，连接心电监护；无菌操作从左侧第4或5肋间进胸，结扎左心耳下前降支冠状动脉，关胸缝皮，青mei素腹腔注射抗感ran，呼吸恢复后拔除气管插管，单笼饲养，注意保温。
手术造模图片
病理结果
动物模型的设计原则
重复性
理想的动物模型应该是可重复的，甚至是可以标准化的。例如用一次定量放血法可造成出血，会si亡，这就符合可重复性和达到了标准化要求。又如用狗做xin肌梗死模型照理很合适，因为它的冠状动脉循环与人相似，而且在实验动物中它适宜做暴露心脏的剖胸手术，但狗结扎冠状动脉的后果差异太大，不同狗同一动脉同一部位的结扎，其后果很不一致，无法预测，无法标准化。相反，大小白鼠、地鼠和豚鼠结扎冠脉的后果就比较稳定一致，可以预测，因而可以标准化。
实验动物的给法
(一)注射给药法
1. 皮射 注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持将针头刺入,固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按片刻，防药液逸出。
2. 皮内注射 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。 如将一定量的性同位素溶液、颜料或致炎物质、等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射 当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的时,常采用肌肉注射。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。
注射时针头要垂直刺入肌肉，如无回血现象即可注射。给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。
4. 腹腔注射 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。
5. 静脉注射 是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。
小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根， 左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈,注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。
（作者： 来源：）
